阿魏酸糖酯抗氧化性论文

摘要：本文测定了合成阿魏酸糖脂的抗氧化性，结果表明用 0.62％的阿魏酸糖脂浸泡 的苹果，阿魏酸葡糖酯抑制效应在处理后 4 天最明显，抑制率为 36.92%，阿魏酸木糖酯 抑制效应在处理后 8 天最明显，抑制率为 19.47%。对于果实的内源乙烯释放，经阿魏酸 葡糖酯和阿魏酸木糖酯处理的苹果分别推迟乙烯释放高峰期 6 天和 4 天。 关键词：阿魏酸葡糖酯；阿魏酸木糖脂；抗氧化性；脂氧合酶 Theantioxygenationofferulaicacidglycolipide LVXiao-zhuo,JIANGWei,WUZanmin.SchoolofPublicHealth,TianjinMedicalUniversity,Tianjin300070,China 【Abstract】Theresistancetooxidationofsyntheticalferulaicacidglycolipidew asinvestigated.Theresultwasshown,applewasdippedin0.62%ferulaicacidglycoli pide,themostinhibitoreffectivenessofglucoseferulaicestersandxyloseferulaicest erwasshownrespectivelytobe36.92%afterfourdaysand19.47%aftereightdays,th efastigiumofreleaseethanewaspostponedrespectivelytobesixdaysandfourdays. 【Keywords】Glucoseferulaicesters;xyloseferulaicester;antioxygenation;Li poxygenase 植物的衰老行为中的主要矛盾是活性氧，乙烯的产生和脂氧合酶（Lipoxygenase， 简称 LOX）起了协同作用［起了协同作用［1,2］，所以抗氧保鲜剂，主要考察对脂氧化酶活性的抑制， 及对乙烯的抑制作用，这样可能达到预期的效果。由于阿魏酸及其衍生物是一种营养性的 安全可靠的食品添加剂，本文通过苹果考察了合成阿魏酸葡糖酯的抗氧化性，即利用紫外 光谱和气相色谱法系统的考察了阿魏酸对脂氧化酶活性的抑制和内源乙烯释放的抑制效果， 通过测试证实阿魏酸糖酯具有较好的抗氧化性，探索开发出一种安全高效的果蔬保鲜剂。 1 实验部分 1．1 实验药品与仪器阿魏酸葡萄糖酯，阿魏酸木糖脂（天津工业大学提供）起了协同作用［；亚油酸 （化学纯，许昌元化生物科技有限公司）起了协同作用［；氢氧化钠（分析纯，天津市东丽区天大化学试 剂厂）起了协同作用［；乙酸-乙酸钠缓冲液（0.1mol/L，pH4.6～5.8）起了协同作用［；磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲 液（0.1mol/L,pH5.8～7.4）起了协同作用［；紫外光度计［UV-2401PC，岛津仪器（苏州）起了协同作用［有限公司 ］；气相色谱仪（GC-Agilent6890N，美国安捷伦科技有限公司）起了协同作用［；高速离心机 （LG10-2.4A 型，北京医用离心机厂）起了协同作用［ 1．2 实验方法 1．2．1 苹果的处理将 5g 左右的合成阿魏酸葡糖酯或阿魏酸木糖酯加热溶于 800ml 去离子水中待温度降至室温时，将反复洗过无伤、大小均一的最新市售的红富士苹果浸入 到浓度约为 0.62%的溶液中，待 5min 后取出，室温下放置待测。 1．2．2 底物的制备 10mmol/L 亚油酸钠（反应底物）起了协同作用［溶液的制取［3］：称取 70mg 的亚油酸钠，7mlTritonX-100 和 4ml 无氧水，用 0.5mol/L 氢氧化钠滴定至溶液 澄清，定容 25ml，分装于 1.5ml 的安瓿瓶中，-18℃保存备用。 1．2.3 粗酶液的提取称取 2.0g 果肉放入研钵中，在液氮中充分研磨，然后将研钵内 的果肉转移至离心试管中，取 9ml 缓冲液充分冲洗研钵后将其转至离心试管中。在 10000r/min 下离心 15min，取上层清液。 1．2．4LOX 活性最适 pH 值的测定本文通过紫外分光光度计测定 LOX 活性最高时的 pH 值［4，5］，具体方法是：将一定 pH 值的缓冲液作参比进行基线测定，然后取 0.025ml10mmol/L 亚油酸钠溶液，缓冲液 2.775ml 和相应缓冲液下酶液 0.200ml 混合 均匀，在 30℃恒温水浴中反应 1min。立即测定吸光度值 A1 并计时，过 1min 后，记录 吸光度值 A2。两次测量的差值(A2-A1)A2-A1)为 ΔAA。 LOX 活性单位：酶活力果肉质量×反应时间 LOX 活性单位：ΔAOD234nm×g-1min-1 由于每次取果肉为 2.0g，ΔAOD=ΔA×10002ΔAA×10002 本实验以 1min 内 3ml 体系在 234nm 的吸光度增加 0.001 作为一个酶活力单位 （U）起了协同作用［，波长设定为 234nm；测定不同缓冲液下的 LOX 活性，需要重新校正基线。 1．2．5 阿魏酸糖酯对 LOX 活性的影响分别提取未用阿魏酸糖酯处理的、用阿魏酸葡 糖酯处理的及用阿魏酸木糖酯处理的苹果果肉的粗酶液，将最适 pH 值的缓冲液倒入比色 皿中，进行基线测定，然后移取 0.025ml 亚油酸钠，缓冲液 2.775ml，酶液 0.200ml 于 样品池中，在 30℃恒温水浴中反应 1min，立即测量 A1 并计时，过 1min 后，再进行测 量 A2,求出 ΔAA，每隔 2 天进行测量 1 次，持续 22 天。 1．2．6 乙烯的定性与定量本实验中利用气相色谱通过纯乙烯对果肉释放的乙烯进行 定性和定量，定量分析采用气相色谱外标法［6］。 气相色谱条件［7］：进样量 8ml，检测器 FID。N2 流速：35ml/min，H2 流速： 50ml/min，AIR 流速：375ml/min，色谱柱温：50℃，进样口温度：120℃，检测器温 度：150℃。 1．2．7 阿魏酸糖酯对乙烯释放量的影响将处理过的苹果，每次均匀取果肉 10g，放 入 135ml 医用药瓶中，将瓶用胶塞封严。过 13.5h 后进行气相色谱测试，每次进样 8ml，通过气相色谱的积分面积从标准曲线上查出对应的乙烯体积 x。 乙烯释放量（y)=ΔA×10002释放乙烯的体积（x）起了协同作用［果肉质量×释放时间 ［单位：nl/(A2-A1)g·h)］2 结果与讨论 2．1LOX 活性最适 pH 值的测定本文以离体烟台优级红富士苹果试验材料，在 pH4.8 ～7.4 范围内测定了 LOX 活性变化。从图 1 中可以明显看出最适 pH 值为 6.4，在 pH6.4 附近，LOX 活性也较高。因此应选 pH=ΔA×100026.4 为酶活性测定的 pH 值。 图 1 苹果中 LOX 最适 pH 值测定 2．2 未处理、葡糖酯处理、木糖酯处理的 LOX 活性变化从图 2 可以看出三个处理 LOX 活性总体都呈上升趋势，未处理的红富士苹果的 LOX 均高于木糖脂和葡糖酯，阿魏 酸葡糖酯抑制效应在处理后 4 天最明显，抑制率为 36.92%，16 天后开始上升。阿魏酸木 糖酯抑制效应在处理后 8 天最明显，抑制率为 19.47%，12 天后开始上升。 图 2 未处理、葡糖酯处理、木糖酯处 理的 LOX 活性变化由此可以得出阿魏酸葡糖酯和阿魏酸木糖酯对离体后的红富士苹果 的 LOX 活性有较好的抑制作用，且阿魏酸葡糖酯的抑制作用比阿魏酸木糖酯的效果要更好 一些。这是可能是由于葡糖酯有五个羟基，更容易使脂氧合酶失去活性，而木糖酯有 4 个 羟基，其抑制效果要逊于葡糖酯 2.3 未处理、葡糖酯处理、木糖酯处理的苹果乙烯释放量变化通过在相同色谱条件下 测定纯乙烯和果肉释放气体，证实释放气体为乙烯。并由不同浓度的纯乙烯做出标准曲线， 利用外标法对不同时间释放的乙烯进行定量。 图 3 未处理、葡糖处理、木糖酯处理的 苹果乙烯释放量变化 由图 3 可见，阿魏酸葡糖酯和阿魏酸木糖酯处理的苹果，明显抑制苹果果实内源乙烯 发生，分别推迟释放乙烯高峰期为 6 天和 4 天出现，而且后期抑制释放量仍是阿魏酸葡糖 酯比阿魏酸木糖酯的抑制作用效果更好一些。 3 结论 实验结果表明合成的阿魏酸葡糖酯和阿魏酸木糖酯对离体后的红富士苹果果实有一定 的抗氧化保鲜效果：其中对于果实的 LOX（脂氧合酶）起了协同作用［活性，阿魏酸葡糖酯抑制效应在处 理后 4 天最明显，抑制率为 36.92%，阿魏酸木糖酯抑制效应在处理后 8 天最明显，抑制 率为 19.47%，对于果实的内源乙烯释放，阿魏酸葡糖酯和阿魏酸木糖酯分别推迟乙烯高 峰期 6 天和 4 天出现。结果表明阿魏酸葡糖酯的抗氧作用比阿魏酸木糖酯的效果要更好。 由于阿魏酸本身无毒，所合成的糖脂也无毒无味，对人体没有副作用，可以预测该类型的 食品保鲜剂的开发具有广阔的前景。 摘要：目的研究泥胡菜的化学成分。方法对泥胡菜全草的 95％(A2-A1)体积分数）起了协同作用［乙醇提取 物的正丁醇萃取部分进行色谱分离，根据光谱数据和理化性质确定各化合物的结构。结果 分离并鉴定了 4 个化合物，分别为：紫丁香苷，水杨苷，尿囊素，绿原酸。结论 4 个化合 物均为首次从本属植物中分离得到。 关键词：泥胡菜；化学成分；紫丁香苷；水杨苷；尿囊素；绿原酸 Abstract:ObjectiveToinvestigatethechemicalconstituentsofHemisteptalyrat a.MethodsTheentireplantswerefirstextractedby95％ofethanol,thenextractedby petroleumether,chloroform,ethylacetateandnbutanol,respectively.Theresiduefbutanol,respectively.Theresiduef romnbutanol,respectively.TheresiduefbutanolextractionwaspurifiedonsilicagelcolumnchromatographandSepha dexLHbutanol,respectively.Theresiduef20column,respectively.Structuresofthepurifiedcompoundswereelucidat edbyMSandNMR.ResultsFourcompoundswereisolatedandidentifiedassyringin(A2-A1)1 ),salicin(A2-A1)2),allantoin(A2-A1)3)andchlorogenicacid(A2-A1)4).ConclusionCompounds1to4werei solatedfromthisplantforthefirsttime． Keywords:Hemisteptalyrata； chemicalconstituents;syringin;salicin;allantion;chlorogenicacid 泥胡菜（HemisteptalyrataBunge）起了协同作用［为菊科泥胡菜属植物，广泛分布于我国各地， 具有清热解毒、消肿祛瘀的作用，临床用于治疗痔漏、痈肿、疔疮、外伤出血和骨折等 ［1］。文献［2-4］报道的从泥胡菜中分离得到的成分主要为黄酮、甾醇和木脂素等化合 物。作者曾对其 95％(A2-A1)体积分数）起了协同作用［乙醇提取物的三氯甲烷和乙酸乙酯萃取部分进行了化学 成分研究［5-7］。本研究报道从正丁醇萃取部分分离得到的 4 个化合物：紫丁香苷(A2-A1)1)， 水杨苷(A2-A1)2)，尿囊素(A2-A1)3)，绿原酸(A2-A1)4)，4 个化合物均为首次从本属植物中分离得到。 1 仪器与材料 药材于 2003 年采自江西省九江县，经江西九江森林植物研究所谭策铭研究员鉴定为 泥胡菜（HemisteptalyrataBunge）起了协同作用［。Fisherbutanol,respectively.TheresiduefJohns 型显微熔点仪(A2-A1)温度未校正)， Perkinbutanol,respectively.TheresiduefElmer241 型旋光仪，Autospecbutanol,respectively.TheresiduefUltimaETOF 质谱仪，INOVAbutanol,respectively.Theresiduef500 核磁共振仪。 柱色谱硅胶、薄层色谱硅胶板均为青岛海洋化工厂产品，SephadexLHbutanol,respectively.Theresiduef20 为 Pharmacia 公司产品。 2 提取与分离 泥胡菜全草 20kg，粉碎后用体积分数为 95％的乙醇回流提取 3 次，提取液浓缩得浸 膏 2.0kg。浸膏悬浮于水中，依次用石油醚、氯仿、乙酸乙酯和正丁醇萃取。正丁醇萃取 部分经反复硅胶柱色谱及 SephadexLHbutanol,respectively.Theresiduef20 纯化得化合物 1(A2-A1)14mg)，2(A2-A1)18mg)，3(A2-A1)21mg)，4(A2-A1)17mg)。 3 结构鉴定 化合物 1:白色粉末，mp195～197℃。FABbutanol,respectively.TheresiduefMSm/z:395［M+Na］ +;1Hbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,500MHz)δ:6.72(A2-A1)2H,s,Hbutanol,respectively.Theresiduef3,5),6.45(A2-A1)1H,d,J=ΔA×1000216.0Hz,H butanol,respectively.Theresiduef7),6.33 (A2-A1)1H,dt,J=ΔA×1000216.0、5.0Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef8),4.09(A2-A1)2H,t,J=ΔA×100025.0Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef9),3.76(A2-A1)6H,s,OCH3),4.90(A2-A1)1H,d, J=ΔA×100027.5Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef1′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C);13Cbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,125MHz)δ:128.4(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef1),152.7(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2,6),104.4(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef 3,5),132.6(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4),133.8(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef7),130.1(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef8),60.9(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef9),56.3(A2-A1)OCH3),102.5(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef1′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),74.1(A2-A1) Cbutanol,respectively.Theresiduef2′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),76.5(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef3′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),69.9(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),77.2(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),61.4(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef6′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C) 。根据以上数据及文献［8］，鉴定 为紫丁香苷。 化合物 2:无色针晶，mp190～192℃。FABbutanol,respectively.TheresiduefMSm/z:309［M+Na］ +;1Hbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,500MHz)δ:7.35(A2-A1)1H,d,J=ΔA×100027.5Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef3),6.98(A2-A1)1H,t,J=ΔA×100027.5Hz,H butanol,respectively.Theresiduef4 ),7.18(A2-A1)1H,t,J=ΔA×100027.5Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef5),7.08(A2-A1)1H,d,J=ΔA×100027.5Hz,H butanol,respectively.Theresiduef6),3.28(A2-A1)2H,m,H butanol,respectively.Theresiduef7),4.75(A2-A1)1H,d,J=ΔA×10002 7.5Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef1′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C);13Cbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,125MHz)δ:154.7(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef1),131.6(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2),127.2(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef3),1 21.7(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4),127.7(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5),114.8(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef6),58.2(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef7),101.4(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef1′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),73.4(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),76.5(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef3′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),69. 8(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),77.1(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),60.8(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef6′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C)。根据以上数据及文献［9］，鉴定为水杨苷。化合物 3: 白色粉末，mp234～235℃。EIbutanol,respectively.TheresiduefMSm/ z:130(A2-A1)100,M+butanol,respectively.TheresiduefCO),115(A2-A1)80),87(A2-A1)75),70(A2-A1)43),60(A2-A1)35);1H butanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSO butanol,respectively.Theresiduefd6,500MHz)δ :10.25(A2-A1)1H,brs,NHbutanol,respectively.Theresiduef1),8.04(A2-A1)1H,s,NHbutanol,respectively.Theresiduef3),5.24(A2-A1)1H,d,J=ΔA×100028.5Hz,H butanol,respectively.Theresiduef4),6.89(A2-A1)1H,d,J=ΔA×100028.5 Hz,NHbutanol,respectively.Theresiduef6),5.79(A2-A1)2H,s,NH2butanol,respectively.Theresiduef8);13Cbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,125MHz)δ:156.8(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2),62.5(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef4 ),173.6(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5),157.4(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef7)。根据以上数据及文献［10］，鉴定为尿囊素。 化合物 4:白色粉末，mp205～206℃。FABbutanol,respectively.TheresiduefMSm/z:377［M+Na］ +;1Hbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,500MHz)δ:1.76(A2-A1)2H,m,Hbutanol,respectively.Theresiduef2),5.06(A2-A1)1H,dt,J=ΔA×100028.5,4.0Hz,H butanol,respectively.Theresiduef3),3. 55(A2-A1)1H,m,Hbutanol,respectively.Theresiduef4),3.92(A2-A1)1H,m,Hbutanol,respectively.Theresiduef5),1.97(A2-A1)2H,m,Hbutanol,respectively.Theresiduef6),7.02(A2-A1)1H,d,J=ΔA×100022.0Hz,H butanol,respectively.Theresiduef2′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),6.75(A2-A1)1 H,d,J=ΔA×100027.0Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef5′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),6.96(A2-A1)1H,dd,J=ΔA×100027.0,2.0Hz,H butanol,respectively.Theresiduef6′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),7.40(A2-A1)1H,d,J=ΔA×1000216.5Hz,H butanol,respectively.Theresiduef7′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),6.13(A2-A1) 1H,d,J=ΔA×1000216.5Hz,Hbutanol,respectively.Theresiduef8′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C);13Cbutanol,respectively.TheresiduefNMR(A2-A1)DMSObutanol,respectively.Theresiduefd6,125MHz)δ:73.4(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef1),37.2(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2),70.8(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef 3),70.3(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4),68.0(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5),36.2(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef6),174.9(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef7),125.6(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef1′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),114.7(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef2′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),145.5(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef3′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C) ,148.3(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef4′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),114.2(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef5′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),121.3(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef6′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),144.9(A2-A1)Cbutanol,respectively.Theresiduef7′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),115.7(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef8′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C),165.7(A2-A1)C butanol,respectively.Theresiduef9′);13CNMR(DMSOd6,125MHz)δ:128.4(C1),152.7(C2,6),104.4(C) 。根据以 上数据及文献［11］，鉴定为绿原酸。 摘要：目的为进一步完善我国药品广告法律规制提出解决措施，以供相关部门参考。 方法采用比较分析法，从法律规制的角度，对目前我国药品广告存在的问题进行分析，探 寻违法药品广告存在的形式和原因。结果与结论借鉴国外药品广告法律规制的经验，从原 因出发，在强制审查、监管主体、广告内容和形式及惩罚措施方面提出了建议和意见。 关键词：药品广告；法律规制；监管 药品作为一种特殊商品，是用来治疗、预防和诊断人的疾病的产品，关系到人民的身 体健康和生命安全。药品广告是消费者获取药品信息的主要途径之一，但其具有信息不对 称的特性，消费者处于信息弱势地位，因此世界各国政府都对其予以规制。我国也不例外， 对药品广告进行规制的法律主要有《广告法》、《反不正当竞争法》、《药品管理法》、 《药品广告管理办法》、《药品广告审查办法》、《药品广告审查标准》等，其中规定处 方药只能在专业期刊上发布广告，非处方药可以在大众媒体上发布广告；发布药品广告必 须事先获得审批，获得药品广告批准文号等等。尽管法律对药品广告给予了特别的重视， 但是违法的药品广告依然屡禁不止。 1 违法广告的表现形式 1.1 从违反药品广告监管方面看违法广告主要有未经审批擅自发布广告、擅自篡改审 批内容、违反禁令发布广告。据统计，2005 年 9 月至 10 月，各省、自治区、直辖市食品 药品监督管理部门依法通报批评并移送同级工商行政管理部门查处违法药品广告 11198 次，在这些违法药品广告中，未经审批擅自发布的为 10345 次，占违法发布广告总数的 92.4%；擅自篡改审批内容的有 790 次，占总数的 7.1%；禁止发布广告的 63 次，占总 数的 0.5%［1］。 1.2 从违法广告的内容及发布形式看违法广告主要有如下表现：自我吹嘘高治愈率、 高有效率、安全无毒副作用；片面利用名人或患者形象做广告；凭空杜撰获得所谓国内外 大奖，谎称攻克国家或者国际医学难题；法律禁止发布的治疗肿瘤等 7 个方面的药品广告 依然不断；一些医疗机构打着专家坐诊、专科门诊、特色医疗等招牌，夸大宣传，推销所 谓“特效”药品；滥用广播咨询节目，以新闻报道、健康栏目、健康热线等形式出现，内容 却涉及医疗机构名称、药品名称、医疗器械及产销商名称，误导病患者。 2 违法药品广告屡禁不止的原因分析 2.1 法律规范不完善虽然关于药品广告的法律规范种类繁多，但是药品广告法律规范 的内容仍然不完善。如《广告法》中有关虚假广告的规定过于简单，既没有明确的概念， 又没有具体的认定标准，实际操作难度大。对明显虚假的广告判定起来比较容易，而对那 些打擦边球和边缘性广告判定却有一定的难度。例如有的广告大部分内容是真实的，只是 在某一个方面表述是虚假的，能否把整个广告认定为虚假广告，即达到何种程度才算虚假 广告，广告法没有在这方面做出规定，致使查处案件时难以定性，若定为部分虚假则难以 计算广告费用，最后以未到工商部门办理手续擅自发布此类广告作为一般违法广告案件了 结此案，影响了查处力度。 2.2 监管主体不统一我国目前的药品广告监督体制中，药品广告的管理机关是工商部 门，省级以上药品监督管理部门负责药品广告批准文号的审批。《中华人民共和国药品管