【关键词】 血液粘度；检测；质量控制
近年来，血液粘度的检测在临床上的应用越来越广泛，但由于血液流变影响因素的多样性和复杂性，国内至今没有统一的质量控制。根据笔者长期的工作经验，参考不同的仪器状况和国内外的相关文献，制定了血液粘度检测的质量控制。
1 血液粘度计的选择
血液粘度计应选用切变率确定、流场均匀的仪器。在使用前，应仔细了解说明书上所注明的仪器的准确率、分辨率、重复性、温度控制、测定时间等主要指标。
准确度：指所测数值与真值（给定）符合的程度。测定时建议以国家计量标准油为标准，在剪切率200s-1时测定低粘度油（2～3mPa·s），在剪切率1s-1时，测定高粘度油（15～25mPa·s），一般应测定５次以上，在低粘度值时测定值与真值的相对偏差应小于5%，高粘度值时测定值与真值的相对偏差应小于3%。
分辨率：在给定条件下，测定出同一物质两种状态下的差异。取压积在40%～50%范围内的正常人全血，以自身血浆调节压积的变化。在高剪切率200s-1时，仪器应能分辨出压积变化2%时的血液表观粘度的差异，在低剪切率1s-1时，仪器应能分辨出压积变化1%时的血液表观粘度的差异。以上测量应各测5次以上，取平均值。
重复性：指所测数值重复性程度。取同一血样，压积在40%～45%范围内，按照仪器操作规程测量10次，在高剪切率200s-1时，血液表观粘度的变异系数应小于2%；低剪切率1s-1时，变异系数应小于5%。
血样用量应根据仪器的样品用量而定，并应严格控制样品计量的精度。样品量的过多或过少都将对测量结果产生影响，同时，标本在吸入时不要产生气泡。
为保证仪器的正常工作和精确性，要做好日常维护和定期保养，并做好保养维护记录。同时对仪器的准确度、分辨率和重复性应定期标定。
2 样品采集
血液样品的采集应保持一致。采血时病人取坐位，清晨空腹安静状态下，采集肘前静脉血。采血时应尽量缩短压脉带的压迫时间，针头刺入血管后立即松开压脉带，安静约5s后开始采血。最好用7号以上的针头，采血过程中不宜过快。以避免过细的针头对红细胞产生一定的剪切力而破坏红细胞。
3 血样防凝
血液需经抗凝处理后才能用于测量，抗凝剂对血液流变特性的影响不可忽视。最好用肝素或EDTA抗凝。肝素抗凝浓度一般为每毫升全血用20～30国际单位，EDTA为每毫升全血3.4～4.8mmol/L。抗凝剂一般采用固相或液相抗凝剂。如用液相抗凝剂一般放在干燥玻璃管或玻璃瓶中，烘干后使用，烘干温度一般不超过56℃。采血完毕后，先取下针头，将血液沿管壁缓缓注入，轻轻摇匀，避免剧烈震动造成溶血。同一批实验应采用同一批号同种抗凝剂。
4 血样保存
血样应随采随测。一般采血后20min即可用于测量，并应于采集后2h以内完成流变学参数的测定。如需放置应在室温下（18～25℃）密封保存，不宜放入冰箱，存放时间以不超过4h为宜，否则将影响血液的生理状态和流变特性。存放血在测量前要充分摇匀。
5 血浆制备
以3000～3500转/min(离心力为1500～2000g) 离心30min，提取上层血浆测量血浆粘度。血浆为牛顿流体。
6 红细胞比积测量
常用文氏管。此法不但结果准确，且可同时观察红细胞沉降率。将血样加入，读取完红细胞沉降率后，以相对离心力2260g，离心30min，读取红细胞柱的高度（以红细胞上层的黑线薄层为准）。
红细胞压积%=红细胞柱的高度/全血高度×100
红细胞压积管必须清洁干燥，电源、电压及离心机载重均可影响离心机的转速，因此应安装稳压装置和固定离心机的载重。
7 测量温度
血液粘度的测量应在37±0.5℃下测量。不同温度的测量结果之间不能比较。外界温度高时还应考虑液体蒸发等因素对其流变特性的影响。
8 测量顺序
对于剪切率可调的仪器在测量时应考虑测量顺序的影响。测量时应采用一致的测量顺序，从低剪切率开始逐渐增加或从高剪切力开始逐渐降低均可。但应注意的是在低剪切率测量时随着测量时间的增加，血样中有形成分的沉降对测量结果的影响。两种测量顺序的结果不可互相比较。
每次测定时，样品池都应清洗干燥，血样及测量系统应保持恒温。加样时不能有气泡产生。
9 测量报告
检测报告中应给出高剪切力200s-1、中剪切力50s-1、低剪切力1s-1下的血液表观粘度值及血浆粘度（单位为mPa·s）、压积、血沉、红细胞的聚集性、变形性等指标。直接测量数据和经公式计算得到的数据应区别列出，同时要注明测定的温度、检测日期及操作人员签名。
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